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小鼠基因编辑技术服务(含敲入、敲除、转基因等)

服务项目

环特CRISPR/Cas9基因编辑技术,可构建转基因、基因敲除(KO)、基因敲入(KI)、点突变(PM)等各类基因编辑小鼠模型,为客户提供小鼠模型定制、联合研发等服务。

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小鼠基因编辑定制流程图:

小鼠基因编辑定制流程

技术介绍

Cas9/gRNA复合物在靶位点进行切割,产生双链断裂,迫使细胞进行紧急修复。通常条件下,细胞偏向于使用非同源末端连接的方式对断裂的双链进行修复,进而造成靶位点基因的插入/缺失突变。CRISPR/Cas9技术采用独特的受精卵处理方式让受精卵偏好同源重组修复路径,大大提高同源重组效率,使得DNA大片段敲入(KI)及条件性敲除(CKO)得以实现。

大小鼠基因编辑

四大优势

● 周期短,效率高; ● 高嵌合率,生殖遗传稳定; ● 可实现DNA大片段敲入; ● 可实现条件性敲除。

服务流程和周期:

小鼠基因编辑服务流程和周期.png

基因敲除小鼠模型构建

完全性基因敲除小鼠

通过CRISPR /Cas9基因敲除技术,针对靶基因设计和构建gRNA与Cas9表达质粒,造成目的基因的功能区域被敲除,获得全身所有的组织和细胞中都不表达该基因的小鼠模型。

CRISPR-Pro完全性基因敲除包括:移码突变、片段基因敲除、双/多基因敲除。

条件性基因敲除小鼠

通过把两个LoxP位点插入到目的基因的一个或几个重要外显子的两端以制备出有两个floxed小鼠。该floxed小鼠在与表达Cre重组酶小鼠杂交之前,该基因表达正常;当floxed小鼠与组织特异性表达Cre酶的小鼠进行杂交后,可实现在特定的组织或细胞中敲除该基因,而在其它组织或细胞中该基因表达正常。

小鼠基因敲除

▲小鼠基因敲除(Cas9-KO)方案图

基因敲入小鼠模型构建

利用CRISPR/Cas9基因敲入技术,针对靶基因设计、构建相应的 gRNA质粒和donor vector,通过Cas9核酸酶的切割作用和同源臂的同源重组,引入特定的突变或外源基因。比如在目的基因上引入点突变(模拟人类遗传疾病模型)或将报告基因(如EGFP,mRFP,mCherry,mYFP,或LacZ等)引入目的基因的特定位点,从而可以通过报告基因来跟踪目标基因的表达;也可以用报告基因取代大小鼠本身的基因,使KO/KI同时发生。

小鼠基因敲入

▲小鼠基因敲入(Cas9-KO)方案图

CRISPR/Cas9基因敲入小鼠包括:点突变、片段基因敲入。

小鼠基因点突变

▲点突变(Cas9-PM)方案图

转基因小鼠模型构建

制作转基因大小鼠最常用的一种方法是DNA原核显微注射。DNA原核显微注射是指将外源DNA通过显微注射的方法注射到受精卵的原核内,注射DNA整合到小鼠受精卵的基因组中,并稳定遗传给后代。 

四大优势

● 更高的整合效率和目的基因表达概率; ● 更大的目的片段的插入; ● 更“精确”拷贝数的插入; ● 可自由移除插入片段。

服务流程和周期

质粒或BAC载体构建(2~3周)→ 原核显微注射:大小鼠(3周)→ 大小鼠的鉴定(1~2周)。

建立转基因大小鼠品系系原则与流程

1、原核显微注射导入的目的基因是将目的基因随机整合到小鼠或者大鼠的基因组,因此首代转基因鼠(F0)将会有不同的整合位点。整合基因的拷贝数可能在不 同的首代转基因鼠中也不同。因此,每只F0代鼠需要作为一个独立的谱系研究,并且与其它F0代鼠分开进行繁殖。由于外源基因一般只整合在二倍体动物的其中 一条染色体上,属于半合子,其后代只有一部分个体带有整合的基因,需要进行筛选鉴定。

2、 原核显微注射获得PCR阳性F0代杂合子鼠。

3、 F0代鼠达到性成熟后(8周)与野生型鼠进行交配,获得F1代鼠。

4、 对交配获得的F1代鼠进行基因型鉴定,理论上,F1代鼠中有50%为转基因杂合子鼠,50%为野生型鼠。

转基因小鼠类型

● 过表达转基因小鼠; ● RNAi转基因小鼠; ● microRNA转基因小鼠; ● 可诱导性/组织特异性转基因小鼠; ● 可诱导性/组织特异性转基因小鼠。

全新基因编辑Immediate-Phenotype技术

全新基因编辑Immediate-Phenotype技术可实现三个月内拿到超过100只有表型小鼠,并可得到靶标基因所带来的表型变化,同时实现长达50KB片段基因编辑。

目前我们可实现基因敲除 、基因敲入和点突变的Immediate-Phenotype,尤其是点突变技术在遗传性疾病发现和疾病研究上有重大意义,可快速实现罕见病的定性。

在商业价值上,可实现生产成本和时间成本大幅降低。

全新基因编辑Immediate-Phenotype技术优势

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环特拥有实验动物生产和使用许可证,已通过CNAS、CMA、AAALAC认证,自有8300m²动物试验实验室。

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